배경 스트렙토마이신은 아미노글리코시드 항생제로 동물성 질병 치료에 광범위하게 사용됩니다. 신경독성과 신장 독성이 있기 때문에 동물 유래 식품에 잔류하는 것은 사람에게 해롭기 때문에 EU, 미국 및 중국에서 사용 중인 경우에만 엄격하게 통제됩니다. 현재 ELISA는 스트렙토마이신 약물의 관리 및 관리에 있어 일반적인 접근법입니다 이 키트는 ELISA 기술을 기반으로 한 약물 잔류 검출을 위한 새로운 제품으로 , 각 수술에서 45분 밖에 소요되지 않고 작동 오류 및 작업 강도를 상당히 최소화할 수 있습니다. 2.시험 원리 이 키트는 직접 경쟁 ELISA를 기반으로 합니다. 마이크로티터 웰은 결합 항체로 코팅되어 있습니다. 시료의 스트렙토마이신 잔류물은 항체에 대한 마이크로티터 플레이트에 코팅된 효소 마커와 경쟁합니다. 효소 콘주게이트 추가 후 색소 모재가 사용되어 색상을 표시합니다. 시료의 흡수율은 표준 곡선과 비교하여 희석도를 곱한 후 시료의 스트렙토마이신 잔류물과 부정적인 관련이 있습니다. 이 잔여물은 시료의 스트렙토마이신 잔류량을 계산할 수 있습니다. 3.응용 프로그램 이 키트는 조직(돼지고기, 닭고기, 간), 생선, 새우, 우유(생유, 우르크, 재구성된 우유, 탈수액우유, 우유 음료), 혈청, 분유(전유분유, 탈림 분유), 꿀, 로열젤리 등 4.교차 반응 스트렙토마이신................................................................ 100.0% 디하이드로스트렙토마이신................ …… 106% 스트렙토마이신 황산산염................................ 67% 네오마이신........ .................... 1% 미만 겐타마이신.................... ..... 1% 미만 카나마이신............................... 1% 미만 아미카신................................................ ............ 1% 미만 스펙티노마이신.............................................. 1% 미만 에이프라마이신................................................ 1% 미만
5.필요한 자료 5.1 장비 --- 마이크로티터 플레이트 분광광도계(450nm/630nm) ---- Homogenizer 보텍스 믹서 원심분리기 분석 균형(인덕턴스: 0.01g) ---- 눈금 피펫: 10ml 고무 피펫 전구 --- 폴리스티렌 원심분리 튜브: 2mL, 50ml --- Micropipettes: 20μl-200μL, 100μL-1000μL 250μL - 다중 피펫 5.2 시약 트리클로로아세트산 (AR) --- 수산화나트륨 (AR) 탈염수 6.키트 구성 요소
항원으로 코팅된 96개의 웰이 있는 마이크로티터 플레이트
표준 용액(6병 × 1ml/병)
0ppb, 0.05ppb, 0.15ppb, 0.45ppb, 1.35ppb, 4.05ppb
표준 용액: (1ml/병) 1ppm
농축 효소 콘주게이트 1ml.......red 캡
효소 콘주게이트 희석제 10ml....... 녹색 뚜껑
기질 용액 7ml ............…흰색 뚜껑
기판 용액 B 7ml............ 빨간색 뚜껑
7ml 용액을 그만 두세요.................... 노란색 뚜껑
20 × 농축 세척액 40ml
투명 캡
2 × 농축 추출 용액 50ml
........................ 파란 뚜껑 7.시약 준비 용액 1:1% 트리클로로아세트산 트리클로로아세트산 1.0g을 탈이온수로 용해하고 완전히 혼합합니다. 용액 2:1.5% 트리클로로아세트산 트리클로로아세트산 1.5g을 탈이온수 100ml와 함께 녹인 후 완전히 혼합합니다. 해결책 3:0.1mol/L NaOH 100ml 의 탈이온수로 수산화나트륨을 0.4g로 용해하고 완전히 혼합합니다. 해결책 4: 추출 용액 2 × 농축 추출 용액을 1:1의 체적 비율로 희석하여 시료 추출에 사용합니다. 이 용액은 1개월 동안 4ºC에서 보관할 수 있습니다. 해결책 5: 세척액 20 × 농축 세척액을 탈이온수로 1:19의 부피 비율로 희석하여 플레이트를 세척하는 데 사용합니다. 이 용액은 1개월 동안 4ºC에서 보관할 수 있습니다. 8.샘플 준비 8.1 작동 전 주의 사항 및 주의 사항 (A) 실험 과정에서 원오프 팁을 사용하고 다른 시약을 흡수할 때 팁을 변경하십시오. (b) 모든 실험 기기가 깨끗한지 확인합니다. 그렇지 않으면 분석 결과에 영향을 미칩니다. (c) 준비된 검체는 즉시 사용해야 하며 실온에서 4시간 이상 보존하지 마십시오. 8.2 조직(돼지고기, 닭고기, 간) -- 균질화된 조직 검체를 50ml 폴리스티렌 원심분리 튜브에 1.0 ± 0.05g의 무게를 낸 다음, 1% 트리클로로아세트산 2mL를 첨가하고(용액 1) 5분 동안 와류를 넣어 완전히 혼합합니다. -- 분리를 위해 원심 분리합니다: 3000g/5분/주위 온도 -- 상등액 100ml를 채취하고, 30ml 의 0.1mol/L NaOH(용액 3)를 추가한 다음 870ml 의 추출 용액(용액 4)을 첨가하고, 30초간 와류를 추가하여 완전히 혼합합니다. 분석용으로 준비된 용액 50ml를 준비합니다. 희석 계수................... 30
8.3 아쿠아틱 제품 (1) 새우 -- 균질화된 새우 샘플 1.0 ± 0.05g을 50ml 폴리스티렌 원심분리 튜브에 넣은 다음, 1% 트리클로로아세트산 2mL를 첨가하고(용액 1) 5분 동안 와류를 넣어 완전히 혼합합니다. -- 분리를 위해 원심 분리합니다: 3000g/5분/주위 온도 -- 상등액 100ml를 채취하고, 30ml 의 0.1mol/L NaOH(용액 3)를 추가한 다음 870ml 의 추출 용액(용액 4)을 첨가하고, 30초간 와류를 추가하여 완전히 혼합합니다. 분석용으로 준비된 용액 50ml를 준비합니다. (2) 생선 -- 균질화된 생선 검체 1.0 ± 0.05g을 50ml 폴리스티렌 원심분리 튜브에 넣은 다음, 1% 트리클로로아세트산 2mL를 첨가하고(용액 1) 5분 동안 와류로 완전히 혼합합니다. -- 분리를 위해 원심 분리합니다: 3000g/5분/주위 온도 -- 상등액 100ml를 채취하고 900ml 의 추출 용액(용액 4)을 첨가한 다음 30초간 와류로 완전히 혼합합니다. 분석용으로 준비된 용액 50ml를 준비합니다. 희석 계수................... 30
8.5 분유 -- 50ml 폴리스티렌 원심분리 튜브에 분유 분말 샘플 1.0 ± 0.05g을 넣은 다음 탈염수 10ml를 첨가합니다. 5분 동안 와류하여 완전히 혼합합니다. -- 상등액 100ml를 채취하고 900ml 의 추출 용액(용액 4)을 첨가한 다음 30초간 와류로 완전히 혼합합니다. 분석용으로 준비된 용액 50ml를 준비합니다. 희석 계수................... 100
8.6여보 -- 1.0x0.05g 꿀 샘플을 50ml 폴리스티렌 원심분리 튜브에 넣은 다음 4mL의 탈염수를 첨가하고 검체가 완전히 용해될 때까지 5분 동안 보텍스합니다. -200ml의 깨끗한 용액을 먹고 , 600ml의 추출 용액(용액 4)을 첨가하고, 30초간 와류로 완전히 혼합합니다. 분석용으로 준비된 용액 50ml를 준비합니다.
희석 계수................... 20
8.5 로얄 젤리 -- 50ml 폴리스티렌 원심분리기 튜브에 로열젤리 샘플 1.0 ± 0.05g을 넣습니다. 1.5% 트리클로로아세트산 3ml(용액 2)를 첨가하고 5분 동안 보텍스한 다음 실온에서(20-25ºC) 3000g로 5분 동안 원심분리합니다. 상등층 100ml를 (유동성 물체를 피하십시오) 가지고 110ml의 0.1mol/L NaOH (용액 3)와 섞은 다음 pH를 6-8로 조정하고 790ml 의 추출 용액(용액 4)을 첨가하고 1분 동안 보텍스한 후 완전히 혼합합니다. 분석용으로 준비된 용액 50ml를 준비합니다. 참고: 이 방법은 배경 효과가 2ppb일 수 있으며, MRL에 따른 샘플 결정에는 영향을 미치지 않습니다.
희석 계수................... 30
9.분석 프로세스 9.1 분석 전 주의 사항 9.1.1 모든 시약과 마이크로웰이 모두 실온(20-25ºC)에 있는지 확인하십시오. 9.1.2 사용 후 즉시 모든 REST 시약을 2-8ºC로 되돌립니다. 9.1.3 마이크로웰을 정확하게 세척하는 것은 분석 과정에서 중요한 단계입니다. 이는 ELISA 분석의 재현성에 중요한 요소입니다. 9.1.4 배양 중 빛을 피하고 마이크로웰을 덮으십시오. 9.2 분석 단계 9.2.1 모든 시약을 실온에서(20-25ºC) 30분 이상 빼내고 사용 전에 부드럽게 흔듭니다. 9.2.2 전자레인지에서 데우는 데 필요한 전자레인지를 꺼내 놓고 나머지는 즉시 2-8ºC의 지퍼백에 넣어 주십시오 . 9.2.3 농축 세척액과 농축 추출 용액을 사용하기 전에 다시 데워야 합니다. 9.2.4 숫자: 모든 마이크로웰 위치에 번호를 매기기를 하고 모든 표준 및 샘플을 복제해서 실행해야 합니다. 표준 및 샘플 위치를 기록합니다. 9.2.5 표준 용액/샘플 추가: 50µl 표준 용액 또는 준비된 샘플을 해당 웰에 추가합니다. 9.2.6 농축 효소 콘주게이트 희석: 농축 효소 콘주게이트와 효소 콘주게이트 희석액을 1:10의 체적 비율로 혼합합니다(예 농축 효소 콘주게이트 0.5ml + 효소 콘주게이트 희석제 5ml), 완전히 혼합합니다(이 혼합물은 보존이 불가능합니다. 즉시 사용하십시오). 9.2.7 희석된 효소 콘주게이트(9.2.6) 추가: 희석된 효소 콘주게이트 50µL를 각 웰에 추가하고 플레이트를 수동으로 흔들어 혼합한 다음 덮개와 함께 25ºC에서 30분 동안 배양합니다. 9.2.8 세척: 뚜껑을 부드럽게 제거하고 우물에서 액체를 부은 다음 4 -5회 10초 간격으로 250µl 희석 세척액(용액 5)으로 마이크로웰을 헹구십시오. 흡수제로 잔류 물을 흡수합니다(사용하지 않은 팁으로 남은 공기 방울을 제거할 수 있음). 9.2.9 컬러: 각 웰에 50µl 의 용액 A 와 50µl 의 용액 B 를 추가합니다. 플레이트를 수동으로 흔들어서 부드럽게 혼합한 후 커버가 있는 상태에서 25ºC에서 15분 동안 배양합니다(12.8 참조). 9.2.10 측정: 각 웰에 정지 용액을 50µl 추가하십시오. 플레이트를 수동으로 흔들어서 부드럽게 혼합하고 450nm에서 흡광도를 측정합니다(이중 파장이 450/630nm인 경우 측정 권장). STOP 용액을 추가한 후 5분 내에 결과를 읽으십시오.) 결과 10.1% 흡광도 표준물질과 시료에 대해 얻은 흡수율 값의 평균값을 첫 번째 표준(표준 영점)의 흡수율 값으로 나눈 다음 100%를 곱합니다. 따라서 0 표준은 100%와 동일하며 흡수율 값은 백분율로 표시됩니다. B-- 표준(또는 샘플)의 흡광도 0-표준 B0-흡광도 10.2 표준 곡선 표준 곡선을 그리려면 표준물질의 흡수율 값을 y축으로, 스트렙토마이신 표준 용액(ppb)의 농도를 반로그로 x축으로 지정합니다. --- 보정 곡선에서 판독할 수 있는 각 샘플의 스트렙토마이신 농도(ppb)에 따라 각 샘플의 해당 희석 계수를 곱하고 실제 시료 농도를 구합니다. 주의 사항: 특별 소프트웨어는 요청에 따라 제공될 수 있는 모든 데이터 분석을 위해 개발되었습니다. 11.감도, 정확도 및 정밀도 테스트 감도: 0.05ppb 감지 제한 조직........................ …………… 1.5ppb 생선과 새우.................... …………… 1.5ppb 우유, 혈청....................................... 1.5ppb 분유....................... ……… 5ppb 허니.................... …………………… 1ppb 로얄 젤리................................ 1.5ppb 정확성 티슈/생선/새우/세럼/허니/로얄 젤리.......................................................................................................... 90 ± 15% 우유/분유.................................................................................. 100 ± 30% 정밀 ELISA 키트의 변동 계수는 10% 미만입니다.
12.알림 12.1 표준값과 표본의 흡수율 평균값은 시약과 표본이 실온(20-25ºC)으로 조절되지 않으면 감소합니다. 12.2 재현성에 실패하지 않도록 마이크로웰을 말려서 단계를 진행하면 마이크로웰스 거치대를 누른 후 즉시 다음 단계를 밟을 수 있습니다. 12.3. 사용하기 전에 각 시약을 부드럽게 흔듭니다. 12.4.0.5m H2SO4 용액으로 피부 관리용액에 닿지 않도록 하십시오. 12.5 키트를 사용하지 마십시오. 서로 다른 배치의 시약을 교환하지 마십시오. 감도가 떨어집니다. 12.6 ELISA 키트를 2-8ºC에서 보관하십시오. 얼지 마십시오. 밀봉 REST 마이크로웰 플레이트는 표준 시료에 직사 광선을 피하며 무색 발색원성 시약은 빛에 민감합니다. 12.7 기질 용액은 색상이 변하는 경우 버려져야 합니다. 제로 표준의 흡수율 값(450/630nm)이 0.5(A450nm < 0.5)보다 작으면 시약이 불량해질 수 있습니다. 12.8 색조가 용액 A와 용액 B를 추가한 후 15분 이상 반응해야 하며, 색조가 너무 밝아서 판별할 수 없는 경우 배양 시간을 20분으로 연장할 수 있습니다. 반대로, 배양 시간을 적절하게 단축하지 마십시오. 12.9 최적의 반응 온도는 25ºC입니다. 온도가 높거나 낮으면 감도와 흡광도 값이 변경됩니다. 13.보관 보관 조건: 2-8ºC 보관 기간: 12개월